ДНК Trichomonas vaginalis в пробе пациента – свидетельствует о инфицировании Trichomonas vaginalis. Формат исследования — количественный.
Trichomonas vaginalis (трихомонада) – возбудитель трихомониаза, относится к простейшим, к классу жгутиковых, роду трихомонад. Наиболее благоприятным местом размножения и обитания трихомонад (Trichomonas vaginalis) является у женщин – влагалище, у мужчин – семенные пузырьки и предстательная железа, а также мочеиспускательный канал у обоих полов. Трихомонады очень чувствительны к внешней среде и практически сразу гибнут вне человеческого организма, поэтому заражение может происходить только при непосредственном (половом) контакте, инфицирование трихомонадами бытовым путем при соблюдении правил личной гигиены крайне маловероятно. Инфицирование трихомонадами происходит при половом контакте с зараженным партнером. Трихомониаз занимает одно из первых мест среди заболеваний мочеполового тракта, передающихся половым путем. В мире, по данным ВОЗ, трихомониазом ежегодно заболевают 170 млн. человек.
Диагноз мочеполового трихомониаза устанавливают на основании клинических признаков заболевания и данных лабораторных исследований. Методы лабораторной диагностики трихомониаза:
Микроскопия нативного и окрашенного препаратов отделяемого половых органов. Метод недостаточно чувствителен, зависит от квалификации врача.
Культуральный метод. Является «золотым стандартом диагностики», хотя имеет ряд существенных недостатков: трудоёмкость, строгие правила преаналитики, длительность исследования (от 2 до 5 дней).
Серологические методы исследования (выявление специфических антител к Trichomonas vaginalis). Выявляемые антитела являются лишь признаками существующей или ранее перенесенной инфекции, но не обеспечивают иммунитета. Выявляются они в течение года после перенесенного заболевания, поэтому их определение не пригодно для установления излеченности.
Метод ПЦР (полимеразная цепная реакция). Обнаружение ДНК Trichomonas vaginalis методом ПЦР является высоко чувствительным и специфичным методом, срок выполнения исследования 2-3 часа. Метод может использоваться для контроля за эффективностью лечения.
Однако ни один из указанных методов не гарантирует полного выявления трихомонад, поэтому сочетание различных лабораторных методов резко повышает выявляемость влагалищных трихомонад.
Клинические признаки трихомониаза.
Диагностика ИППП.
Контроль эффективности лечения трихомониаза.
Частая смена половых партнеров.
Практика секса без барьерных контрацептивов.
Обследование беременных.
Специальной подготовки не требуется. Перед взятием материала из уретры рекомендуется не мочиться в течение 1,5-2 часов. Недопустимо забирать материал у женщин во время месячных.
Соскоб из уретры. Перед взятием материала наружное отверстие уретры обработать тампоном смоченным стерильным физиологическим раствором. Провести массаж уретры. Далее ввести зонд в уретру (у женщин на глубину 1-1,5 см., у мужчин на глубину 3-4 см). Осторожно собрать материал вращательными движениями. Извлечь зонд и поместить его рабочую часть в пробирку с транспортной средой, аккуратно прополоскать в среде для отделения материала, отжать остатки среды о стенки пробирки, зонд удалить, пробирку закрыть, защёлкнув замок.
Соскоб из влагалища. Погрузить рабочую часть зонда в вагинальное отделяемое заднего свода влагалища и, вращая зонд, максимально набрать материал. Извлечь зонд и поместить его рабочую часть в пробирку с транспортной средой, аккуратно прополоскать в среде для отделения материала, отжать остатки среды о стенки пробирки, зонд удалить, пробирку закрыть, защёлкнув замок.
Соскоб из цервикального канала. Удалить слизь с поверхности шейки матки стерильным тампоном, ввести зонд на глубину 0,5-1,5 см. в цервикальный канал и осторожно сделать два полных оборота по часовой и против часовой стрелки. Извлечь зонд, избегая касания стенок влагалища и поместить его рабочую часть в пробирку с транспортной средой, аккуратно прополоскать в среде для отделения материала, отжать остатки среды о стенки пробирки, зонд удалить, пробирку закрыть, защёлкнув замок.
На этикетке пробирки (контейнера) указать Ф.И.О. пациента (или номер) и вид исследования. В направлении на исследование обязательно указать Ф.И.О. пациента, пол, дату рождения, номер пробирки (контейнера), вид материала и необходимые исследования. Материал должен быть доставлен в лабораторию в день взятия. До передачи курьеру, материал может храниться в холодильнике при температуре + 2 - +8ºС.
Материал для исследования: соскоб из уретры, влагалища, цервикального канала.
Метод исследования: ПЦР Real time
Единицы измерения: Lg (копий/105клеток)
Референсные значения: ДНК Trichomonas vaginalis не обнаружена 0 Lg (копий/105клеток)
ДНК Trichomonas vaginalis:
> 0 Lg (копий/105клеток): инфицирование Trichomonas vaginalis.
< 0 Lg (копий/105клеток): нет инфицирования Trichomonas vaginalis.
Количество клеток в исследуемом образце достаточное для проведения анализа должно быть ≥ 4,0 Lg (копий/105клеток).
Дополнительно рекомендуемые исследования: C001 Общий анализ мочи; C070 Микроскопическое исследование отделяемого мочеполовых органов (эпителиальные клетки, эритроциты, лейкоциты, грибы, микрофлора, в т.ч. гонококки и трихомонады) 3 локализации; E610 Антитела к Trichomonas vaginalis IgG.
Анкирская А.С. Исследование биоматериалов при инфекциях женских половых органов./ В: Меньшиков В.В. (ред). Методики клинических лабораторных исследований: Справочное пособие. Том 3. Клиническая микробиология. Бактериологические исследования. Микологические исследования. Паразитологические исследования. Инфекционная иммунодиагностика. Молекулярные исследования в диагностике инфекционных заболеваний. // М.: Лабора, 2009: 51-64.
Lossick J.G., Kent H.L. Trichomoniasis: trends in diagnosis and management. /Am J Obstet Gynecol. 1991 Oct; 165(4 Pt 2):1217-1222.
Van Schalkwyk J., Yudin M.N. Vulvovaginitis: screening for and management of trichomoniasis, vulvovaginal candidiasis, and bacterial vaginosis. /J Obstet Gynaecol Can. 2015 Mar; 37(3):266-274.
В клиниках партнеров BION или в процедурном кабинете
